步驟

一、材料

1. 緩沖液與溶液

10X 擴(kuò)增緩沖液

5X DD-PCR 反轉(zhuǎn)錄緩沖液（250 mmol/L Tris-Cl（pH 8.3），375 mmol/L KCl，15 mmol/L MgCl2）

DTT ( 100 mmol/L)

4 種 dNTP 貯存液（20 mmol/L，pH 8.0)

胎盤 RNase 抑制劑（20 單位/ml）

5X 測序膠上樣緩沖液

2. 酶與緩沖液

反轉(zhuǎn)錄酶（RNA 依賴的 DNA 聚合酶)

用于 DD-PCR 中的反轉(zhuǎn)錄酶是一種 RNaseH 活性缺陷型的酶（如購自 Life Tech-nologies 公司的產(chǎn)品 Superscript 或者購自 Stratagene 公司的產(chǎn)品 StrataScript）。

熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶

3. 核酸與寡核苷酸

錨定 3'-寡核苷酸引物（300 μg/ml）溶于 10 mmol/L Tris-Cl ( pH 7.6 ) 中，內(nèi)含有 0.1 mmol/L EDTA

隨機(jī) 5'-寡核苷酸引物（50 μg/ml）溶于 10 mmol/L Tris-Cl ( pH 7.6）中，內(nèi)含有 0.1 mmol/L EDTA

總 RNA（100 μg/ml）

4. 凝膠

瓊脂糖凝膠

電解質(zhì)梯度測序膠

5. 放射性物質(zhì)

帶放射標(biāo)記的 dATP（10 μCi/μl，放射性比活度為 3000 Ci/mmol）

6. 專用設(shè)備

自動微量移液器的屏蔽型槍頭

離心管（0.5 ml，薄壁擴(kuò)增反應(yīng)專用離心管）

正向排液式移液器

PCR 儀

水浴箱水溫預(yù)設(shè)在 65℃ 和 94℃



二、方法

優(yōu)化 DNA 濃度：cDNA 第一鏈的制備

1. 用幾支 0.5 ml 離心管，設(shè)立實驗反應(yīng)管系列，建立對照管和實驗管的 RNA 最佳濃度，所謂最佳濃度指后續(xù) DD-PCR 擴(kuò)增在凝膠電泳和放射自顯影上呈現(xiàn) 100~300 條譜帶。用水對 RNA 樣品進(jìn)行 5 倍連續(xù)稀釋系列，產(chǎn)生 RNA 樣品濃度范圍在 1 μg/ml 與 100 μg/ml 之間系列。

2. 從錨定 3'-寡核苷酸引物庫中選擇一個或更多的引物，設(shè)立不同的稀釋 RNA 模板量的復(fù)性反應(yīng)系列：

RNA 模板                  8.0 μl

錨定 3'-寡核苷酸引物  2.0 μl 

反應(yīng)管在 65℃ 水浴上溫育 10 min，然后放置在 37℃ 水浴上。

復(fù)性反應(yīng)中總 RNA 量應(yīng)該在 8 ng 至 800 ng 之間變動。

3. 加入如下復(fù)性反應(yīng)試劑：

5X DD-PCR 反轉(zhuǎn)錄緩沖液         4 μl

100 mmol/L DDT                      2 μl

200 μmol/L 4 種 dNTP 混合液    2 μl

約 25 單位/μl RNase 抑制劑      0.25 μl

200 單位/μl 反轉(zhuǎn)錄酶                0.25 μl

H2O 補(bǔ)足至                             20 μl

反應(yīng)管溫育樣品管在 37℃ 反應(yīng) 1 h。

4. 將反應(yīng)管內(nèi)樣品在 94℃ 加熱 10 min，使反轉(zhuǎn)錄酶失活。

優(yōu)化 RNA 濃度：雙鏈 cDNA 的擴(kuò)增與制備

5. 用 8 只 0.5 ml 擴(kuò)增管設(shè)立兩個實驗系列。每只管應(yīng)該包含如下試劑：

10X 擴(kuò)增緩沖液                                                2 μl

錨定 3' 寡核苷酸引物                                        2 μl

20 mmol/L 4 種 dNTP 混合液（pH 8.0)              1 μl

[α-33P] dATP 或 [α-35S] dATP ( 3000 Ci/mmol） 1 μl

5 單位/μl 熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶                            1 單位

H2O                                                                9 μl

對于每支反應(yīng)管加入 2 μl 5' 隨機(jī)引物，輕彈管壁使反應(yīng)液混勻。

6. 從含有測試 RNA 與對照管 RNA 的反轉(zhuǎn)錄的兩個系列的 8 支試管中各取 3 μl 樣品，蓋上試管，輕輕混勻樣品。

7. 如果 PCR 儀沒有配置加熱蓋，在反應(yīng)混合液的上層加一滴礦物油（約 50 μl）。放置離心管在 PCR 儀上。

8. 擴(kuò)增反應(yīng)有變性、復(fù)性和聚合（延伸反應(yīng)）；相應(yīng)的循環(huán)條件與溫度列表如下：

9. 擴(kuò)增反應(yīng)程序運行結(jié)束后，從 PCR 儀取出反應(yīng)管，每只反應(yīng)管各加入 5 μl 5X 測序膠上樣緩沖液。

10. 應(yīng)用 DNA 序列分析型的電解質(zhì)梯度聚丙烯酰凝膠電泳分離這種放射標(biāo)記擴(kuò)增物電泳在穩(wěn)壓電源作用下進(jìn)行，到二甲苯腈藍(lán)電泳至凝膠長度的三分之二處結(jié)束。抽干凝膠，將凝膠放置在放射自顯影底片的下部壓片。

11. 檢查對照與試驗 RNA 的不同濃度來源的擴(kuò)增反應(yīng)產(chǎn)物的 DNA 條帶譜型。一種理想的差異顯示的條帶譜型最好能清晰地分辨 100~250 條電泳譜帶。DNA 模板的最佳量對于不同的樣品、不同的引物也是個不相同的。選擇對照與試驗 RNA 的最適濃度，使得在該濃度下引物配對引導(dǎo)擴(kuò)增得到最大量的 DNA 產(chǎn)物。

用于差異顯示的擴(kuò)增 cDNA 的制備

12. 應(yīng)用所有的引物組合與 RNA 模板最佳量，重新復(fù)性，反轉(zhuǎn)錄和擴(kuò)增反應(yīng)。設(shè)計在 PCR 儀上用 96 孔板即微量滴定板設(shè)立所有的反應(yīng)循環(huán)。

13. 應(yīng)用聚丙烯酰胺測序膠電泳分離擴(kuò)增反應(yīng)產(chǎn)物，如步驟 9 和 10。用每對引物所獲得的擴(kuò)增反應(yīng)樣品上樣在測序凝膠上的毗鄰的泳道上，比如應(yīng)用配對引物 A + B 從一種 RNA 樣品所獲得的擴(kuò)增樣品與同一對引物 A+B 從另一種 RNA 樣品所獲得的另一個擴(kuò)增產(chǎn)物在凝膠泳道上相鄰。用這種方法對于樣品編排序號后大大簡化了對于放射自顯影帶譜的比較研究。

14. 從不同的 RNA 樣品中用每一對引物所獲得的擴(kuò)增產(chǎn)物的帶譜的比較研究。

在鑒定不同的表達(dá)條帶時，通常重復(fù)試驗確定初始發(fā)現(xiàn)的可重復(fù)性是極為重要的方法。盡管這種預(yù)防措施可能不具有可操作性的，但在理想的情況下，兩種 RNA 的不同批次的樣品應(yīng)該被同時應(yīng)用，便于相互印證。

差異顯示的 cDNA 的回收與重擴(kuò)增

15. 從抽干的聚丙烯酰胺凝膠上回收目的條帶。防止放射自顯影 X 線片在凝膠的上方，對于放射自顯影 X 線片上的目的條帶的位置用軟鉛筆輕劃標(biāo)記。用干凈的剃須刀刀刃沿鉛筆標(biāo)記將上層的放射自顯影膠片與下層的凝膠一并切割，切下每一條目的條帶，將目的條帶的凝膠條貼放在 Whatman 3 MM 紙上；將每一薄片的抽干凝膠紙片放入一只 0.5 ml 的離心管（內(nèi)有 50 μl 滅菌水）。

16. 用小的針穿刺每一只浸泡過夜的 0.5 ml 的離心管的底部；把每一只穿刺管放入一只 1.5 ml 離心管中，離心 20s 后將洗脫液轉(zhuǎn)移至另一只更大的離心管中，丟棄擴(kuò)增管中殘余的凝膠條和 Whatman 3 MM 紙條。

17. 用已洗脫液中的 DNA 片段作模板，在擴(kuò)增反應(yīng)管中一次加入如下試劑：

10X 擴(kuò)增反應(yīng)緩沖液                             2 μl

聚丙烯酰胺凝膠中洗脫的 DNA 樣品       3 μl

5'-隨機(jī)寡核苷酸引物                             2 μl

3'-錨定寡核苷酸引物                             2 μl

20 mmol/L 4 種 dNTP 混合液（pH 7.0)  1 μl

5 單位/μl Taq 熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶          2 單位

H2O                                                    9.5 μl

18. 如果 PCR 儀沒有配置加熱蓋，在反應(yīng)混合液的上層應(yīng)加一滴礦物油（約 50 μl）。放置離心管在 PCR 以上。

19. 擴(kuò)增反應(yīng)有變性、復(fù)性和聚合（延伸反應(yīng)）；相應(yīng)的循環(huán)條件與溫度如下表：

20. 抽取每種重擴(kuò)增樣品的 5%~10%，用 1% (m/V) 瓊脂糖凝膠電泳來估計出重擴(kuò)增 DNA 片段的含量。

21. 若用礦物油覆蓋在微量離心管內(nèi)樣品液體的上層（步驟 18），反應(yīng)結(jié)束后可用 150 μl 氯仿抽提去除。

22. 將重擴(kuò)增 DNA 片段連入一種帶有 dT 尾的載體（如 Promega 公司出品的 pEGM T 載體），取部分連接液轉(zhuǎn)化大腸桿菌宿主菌。

23. 從培養(yǎng)平皿上挑取 6 個或更多個轉(zhuǎn)化菌落，抽提其質(zhì)粒 DNA，應(yīng)用相應(yīng)的限制性內(nèi)切核酸酶進(jìn)行酶切鑒定，通過比較插入片段的大小確定重組轉(zhuǎn)化子。

24. 應(yīng)用盡可能多的途徑和方法對差異表達(dá)的候補(bǔ)的 cDNA/mRNA 分子進(jìn)行確證，這種確證方法包括 Northern 雜交，RNase 保護(hù)或定量 PCR。應(yīng)用 mRNA 原位雜交技術(shù)能夠?qū)碜阅撤N疾病或不同發(fā)育階段的組織和差異表達(dá)的特異轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物進(jìn)行組織定位。

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